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GB 4789.3-2010 食品微生物学检验 大肠菌群计数

来源:网络收集 时间:2026-08-06
导读: 中华人民共和国国家标准 GB 4789.3—2010 食品安全国家标准 食品微生物学检验 大肠菌群计数 National food safety standard Food microbiological examination: Enumeration of coliforms 中华人民共和国卫生部 发布 前 言 本标准代替GB/T 4789.3-2008《食品

中华人民共和国国家标准

GB 4789.3—2010

食品安全国家标准

食品微生物学检验 大肠菌群计数

National food safety standard

Food microbiological examination: Enumeration of coliforms

中华人民共和国卫生部 发布

前 言

本标准代替GB/T 4789.3-2008《食品卫生微生物学检验 大肠菌群计数》。 本标准与GB/T 4789.3-2008相比,主要修改如下: ——修改了标准的中英文名称;

——“第二法 大肠菌群平板计数法”的平板菌落数的选择范围修改为“15 CFU~150 CFU”;——删除了“第三法 大肠菌群PetrifilmTM 测试片法”。 本标准的附录A、附录B为规范性附录。 本标准所代替标准的历次版本发布情况为:

——GB 4789.3-1984、GB 4789.3-1994、GB /T 4789.3-2003、GB /T 4789.3-2008。

食品安全国家标准

食品微生物学检验 大肠菌群计数

1 范围

本标准规定了食品中大肠菌群(Coliforms)计数的方法。 本标准适用于食品中大肠菌群的计数。 2 术语和定义

2.1 大肠菌群coliforms

在一定培养条件下能发酵乳糖、产酸产气的需氧和兼性厌氧革兰氏阴性无芽胞杆菌。 2.2 最可能数most probable number,MPN

基于泊松分布的一种间接计数方法。 3 设备和材料

除微生物实验室常规灭菌及培养设备外,其他设备和材料如下: 3.1 恒温培养箱:36 ℃±1 ℃。 3.2 冰箱:2 ℃~5 ℃。 3.3 恒温水浴箱:46 ±1 ℃℃。 3.4 天平:感量0.1 g。 3.5 均质器。 3.6 振荡器。

3.7 无菌吸管:1 mL(具0.01 mL刻度)、10 mL(具0.1 mL刻度)或微量移液器及吸头。3.8 无菌锥形瓶:容量500 mL。 3.9 无菌培养皿:直径90 mm。

3.10 pH计或pH比色管或精密pH试纸。 3.11 菌落计数器。 4 培养基和试剂

4.1 月桂基硫酸盐胰蛋白胨(Lauryl Sulfate Tryptose,LST)肉汤:见附录A中A.1。

4.2 煌绿乳糖胆盐(Brilliant Green Lactose Bile,BGLB)肉汤:见附录A中A.2。 4.3 结晶紫中性红胆盐琼脂(Violet Red Bile Agar,VRBA):见附录A中A.3。 4.4 磷酸盐缓冲液:见附录A中A.4。 4.5 无菌生理盐水:见附录A中A.5。 4.6 无菌1 mol/L NaOH:见附录A中A.6。 4.7 无菌1 mol/L HCl:见附录A中A.7。

第一法 大肠菌群MPN计数法

5 检验程序

大肠菌群MPN计数的检验程序见图1。

图1 大肠菌群MPN计数法检验程序 6 操作步骤 6.1 样品的稀释

6.1.1 固体和半固体样品:称取25 g样品,放入盛有225 mL磷酸盐缓冲液或生理盐水的无菌均质杯内, 8000 r/min~10000 r/min均质1 min~2 min,或放入盛有225 mL磷酸盐缓冲液或生理盐水的无菌均质袋中,用拍击式均质器拍打1 min~2 min,制成1:10的样品匀液。

6.1.2 液体样品:以无菌吸管吸取25 mL样品置盛有225 mL磷酸盐缓冲液或生理盐水的无菌锥形瓶(瓶内预置适当数量的无菌玻璃珠)中,充分混匀,制成1:10的样品匀液。

6.1.3 样品匀液的pH值应在6.5~7.5之间,必要时分别用1 mol/L NaOH或1 mol/L HCl调节。

6.1.4 用1 mL无菌吸管或微量移液器吸取1:10样品匀液1 mL,沿管壁缓缓注入9 mL磷酸盐缓冲液或生理盐水的无菌试管中(注意吸管或吸头尖端不要触及稀释液面),振摇试管或换用1支1 mL无菌吸管反复吹打,使其混合均匀,制成1:100的样品匀液。

6.1.5 根据对样品污染状况的估计,按上述操作,依次制成十倍递增系列稀释样品匀液。每递增稀释1次,换用1支1 mL无菌吸管或吸头。从制备样品匀液至样品接种完毕,全过程不得超过15 min。 6.2 初发酵试验

每个样品,选择3个适宜的连续稀释度的样品匀液(液体样品可以选择原液),每个稀释度接种3管月桂基硫酸盐胰蛋白胨(LST)肉汤,每管接种1mL(如接种量超过1 mL,则用双料LST肉汤),36 ℃±1 ℃培养24 h±2 h,观察倒管内是否有气泡产生,24 h±2 h产气者进行复发酵试验,如未产气则继续培养至48 h±2 h,产气者进行复发酵试验。未产气者为大肠菌群阴性。 6.3 复发酵试验

用接种环从产气的LST肉汤管中分别取培养物1环,移种于煌绿乳糖胆盐肉汤(BGLB)管中,36 ℃±1 ℃培养48 h±2 h,观察产气情况。产气者,计为大肠菌群阳性管。 6.4 大肠菌群最可能数(MPN)的报告

按6.3确证的大肠菌群LST阳性管数,检索MPN表(见附录B),报告每g(mL)样品中大肠菌群的MPN值。

第二法 大肠菌群平板计数法

7 检验程序

大肠菌群平板计数法的检验程序见图2。

图2 大肠菌群平板计数法检验程序

8 操作步骤

8.1 样品的稀释

按6.1进行。 8.2 平板计数

8.2.1 选取2个~3个适宜的连续稀释度, 每个稀释度接种2个无菌平皿,每皿1 mL。同时取1 mL生理盐水加入无菌平皿作空白对照。

8.2.2 及时将15 mL~20 mL冷至46 ℃的结晶紫中性红胆盐琼脂(VRBA)约倾注于每个平皿中。小心旋转平皿,将培养基与样液充分混匀,待琼脂凝固后,再加3 mL~4 mLVRBA覆盖平板表层。翻转平板,置于36 ℃±1 ℃培养18 h~24 h。 8.3 平板菌落数的选择

选取菌落数在15 CFU~150 CFU之间的平板,分别计数平板上出现的典型和可疑大肠菌群菌落。典型菌落为紫红色,菌落周围有红色的胆盐沉淀环,菌落直径为0.5 mm或更大。 8.4 证实试验

从VRBA平板上挑取10个不同类型的典型和可疑菌落,分别移种于BGLB肉汤管内,36 ℃±1 ℃培养24 h~48 h,观察产气情况。凡BGLB肉汤管产气,即可报告为大肠菌群阳性。 8.5 大肠菌群平板计数的报告

经最后证实为大肠菌群阳性的试管比例乘以8.3中计数的平板菌落数,再乘以稀释倍数,即为每g(mL)样品中大肠菌群数。例:10-4样品稀释液1 mL,在VRBA平板上有100个典型和可疑菌落,挑取其中10个接种BGLB肉汤管,证实有6个阳性管,则该样品的大肠菌群数为:100×6/10×104/g(mL)=6.0×105 CFU/g(mL)。

附录A

(规范性附录) 培养基和试剂

A.1 月桂基硫酸盐胰蛋白胨(LST)肉汤

A.1.1 成分

胰蛋白胨或胰酪胨 20.0 g 氯化钠 5.0 g 乳糖 5.0 g 磷酸氢二钾(K2HPO4) 2.75 g 磷酸二氢钾(KH2PO4) 2.75 g 月桂基硫酸钠 0.1 g 蒸馏水 1 000 mL

pH 6.8±0.2 A.1.2 制法

将上述成分溶解于蒸馏水中,调节pH。分装到有玻璃小倒管的试管中,每管10 mL。121 ℃高压灭菌15 min。

A.2 煌绿乳糖胆盐(BGLB)肉汤

A.2.1 成分

蛋白胨 10.0 g 乳糖 10.0 g 牛胆粉(oxgall或oxbile)溶液 200 mL 0.1%煌绿水溶液 13.3 mL 蒸馏水 800 mL pH 7.2±0.1 A.2.2 制法

将蛋白胨、乳糖溶于约500 mL蒸馏水中,加入牛胆粉溶液200 mL(将20.0 g脱水牛胆粉溶于200 mL蒸馏水中,调节pH至7.0~7.5),用蒸馏水稀释到975 mL,调节pH,再加入0.1%煌绿 …… 此处隐藏:2947字,全部文档内容请下载后查看。喜欢就下载吧 ……

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